儲存條件
本試劑盒在室溫(15-25℃)干燥條件下,可保存12個月;更長時間的保存可置于2-8℃。(注意:當低溫貯存時,使用前應先將試劑盒內的溶液在室溫中放置一段時間,必要時可在37℃水浴中預熱10 min,以平衡溶液溫度)。單獨包裝的RNase A在室溫可穩定保存12個月以上。加入RNase A后的溶液P1應置于2-8℃保存,可穩定保存6個月。
產品簡介
本試劑盒采用獨特的硅膠膜吸附技術,高效專一地結合質粒DNA。同時采用特殊的去內毒素溶液ER和過濾柱CS1,可有效的去除內毒素、蛋白等雜質;整個提取過程僅需1個小時,方便快捷。以下操作步驟適用于提取5-15 ml過夜培養的大腸桿菌,質粒提取得率和質量與宿主菌的種類和培養條件,細胞的裂解,質粒拷貝數,質粒的穩定性,抗生素等因素有關。
使用本試劑盒提取的質粒DNA可適用于轉染多種細胞及各種常規操作,包括酶切、PCR、測序、連接等實驗。
注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。
1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A(將試劑盒中提供的 RNase A 全部加入),混勻,置于 2-8℃保存。
2.使用前先檢查溶液 P2 和 P3 是否出現渾濁,如有混濁現象,可在 37℃水浴中加熱幾分鐘,即可恢復澄清。
3.所有離心步驟均為使用臺式離心機室溫下進行離心,速度為 12,000 rpm (~13,400×g )。
4.去內毒素溶液 ER 在多次開蓋使用后,可能會有細微的顏色變化,不影響最終質粒提取效率和純度。
5.提取的質粒量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。如果所提質粒為低拷貝質粒或大于 10 kb 的大質粒,應加大菌體使用量,同時按比例增加 P1、P2、P3 的用量,洗脫緩沖液應在 65-70℃預熱。可以適當的延長吸附和洗脫的時間,以增加提取效率。
操作步驟
使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇,加入體積請參照瓶上的標簽。 本產品僅供科研使用,請勿用于臨床診斷及其它用途
1.取5-15 ml過夜培養的菌液加入離心管中,12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min,盡量吸除上清。
注意:菌液較多時可以通過幾次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中, 菌體量以能夠充分裂解為佳,過多的菌體裂解不充分會降低質粒的提取效率。
2.向留有菌體沉淀的離心管中加入500 μl溶液P1 (請先檢查是否已加入RNaseA),使用移液器吸吐或渦旋振蕩器徹底懸浮細菌細胞沉淀。
注意:請務必徹底懸浮細菌沉淀,如果有未徹底混勻的菌塊,會影響裂解,導致提取量和純度偏低。
3.向離心管中加入500 μl溶液P2,溫和地上下翻轉6-8次使菌體充分裂解。
注意:溫和地混合,不要劇烈震蕩,以免污染基因組DNA。此時菌液應變得清亮粘稠,所用時間不應超過5 min,以免質粒受到破壞。如果未變得清亮,可能由于菌體過多,裂解不徹底,應減少菌體量。
4.向離心管中加入500 μl溶液P3,立即溫和地上下翻轉6-8次,充分混勻,此時會出現白色絮狀沉淀,然后室溫放置10 min左右,12,000 rpm (~13,400×g ) 離心10 min,此時在離心管底部形成沉淀。
注意:P3加入后應立即混合,避免產生局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀,可再次離心后取上清。
5.將上一步收集的上清液分次加入過濾柱CS1(過濾柱放入收集管中),12,000 rpm(~13,400×g ) 離心2min,小心地將過濾離心后收集管中得到的溶液分次加入吸附柱CP2中(吸附柱放入收集管中),(如果過濾柱中有殘余的液體,說明步驟4的上清中雜質過多,可以延長離心的時間;如果離心后收集管底部有少量的沉淀,盡量地吸取上清)。
6.12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CP2放入收集管中。
7.向吸附柱CP2加入750 ml 去內毒素溶液ER(已經加入異丙醇),靜置2分鐘使管柱膜平衡,室溫12,000rpm (~13,400×g)離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
8.向吸附柱CP2中加入700 μl漂洗液PW(請先檢查是否已加入無水乙醇),12,000 rpm(~13,400×g ) 離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CP2放入收集管中。
注意:加入漂洗液PW后,如果室溫靜置2-5 min,有助于更好地去除雜質。
9.重復操作步驟8.
10.將吸附柱CP2重新放回收集管中,12,000 rpm (~13,400×g ) 離心2 min,目的是將吸附柱中殘余的漂
洗液去除。
注意:漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應(酶切、PCR等)實驗。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響,建議將吸附柱CP2開蓋,置于室溫放置數分鐘,以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。
11.將吸附柱CP2置于一個干凈的離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加100-300 μl洗脫緩沖液TB,室溫放置2 min,12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min將質粒溶液收集到離心管中。
注意:洗脫緩沖液體積不應少于100μl,體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響,若后續做測序,需使用ddH2O做洗脫液,并保證其pH值在7.0-8.5范圍內,pH值低于7.0會降低洗脫效率。且DNA產物應保存在-20℃,以防DNA降解。為了增加質粒的回收率,可將得到的溶液重新加入吸附柱中,室溫放置2 min,12,000 rpm(~13,400×g) 離心2 min,將質粒溶液收集到離心管中。
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